IPS诱导肠类器官的培养分为三个主要阶段:人多能干细胞的培养、内胚层分化及中/后肠模式化诱导、以及类器官的培养。本文将重点讨论第二阶段,即内胚层分化及中/后肠模式化诱导。
一、前期准备
1. 试剂与设备
在进行内胚层分化及中/后肠模式化诱导前,准备以下试剂与设备:
- 细胞: H1/H9hESC或患者来源的iPSCs。
- 培养基: 人多能干细胞培养基(abs9403)、RPMI1640(abs9484)。
- 消化液: 人多能干细胞消化液(abs9409)。
- 培养基添加剂: L-丙氨酰-L-谷氨酰胺溶液(2mM)(abs9295)、双抗(abs9244)。
- 生长因子: ActivinA(100ng/mL)(abs05801)、FGF4(500ng/mL)(abs06269)、WNT3a(500ng/mL)(abs05632)。
- 基质胶: 即用型基质胶(培养板包被)(abs9410)、类器官专用基质胶(abs9495)。
- 血清: 透析胎牛血清(abs945)。
- 关键设备: 表面培养皿、立体显微镜、无菌手术刀、预冷微量离心管。
2. 试剂配制
内胚层分化培养基的配制步骤如下:
- Day 1: RPMI1640 + L-丙氨酰-L-谷氨酰胺溶液(2mM) + 双抗(1%) + ActivinA(100ng/mL)。
- Day 2: Day 1配方 + 透析胎牛血清(0.2%)。
- Day 3: Day 1配方 + 透析胎牛血清(2%)。
中/后肠分化培养基的配制则为:RPMI1640 + 透析胎牛血清(2%) + FGF4(500ng/mL) + WNT3a(500ng/mL)。
二、hPSCs传代与铺板
1. 细胞传代(耗时约2小时)
使用人多能干细胞消化液对hPSCs进行消化,直至边缘卷起。采用细胞刮刀轻柔剥离细胞团,并反复吹打至1-2mm大小的细胞团。按1:6的比例接种至Matrigel包被的24孔板中,每孔约5000个细胞团,轻敲培养板使细胞均匀分布后,在37°C下过夜培养。
2. 细胞扩增至85-90%融合(约3-4天)
每日更换人多能干细胞培养基,观察细胞密度。特别注意:密度过高可能导致自发分化,而密度过低则会影响分化效率,如有必要需重新铺板。
三、内胚层分化(为期3天)
- Day 1: 吸除人多能干细胞培养基,加入Day 1内胚层培养基(无血清),培养24小时。
- Day 2: 更换为Day 2内胚层培养基(含0.2%透析胎牛血清),培养24小时。
- Day 3: 更换为Day 3内胚层培养基(含2%透析胎牛血清),培养24小时。
- 验证分化效率(可选): 通过免疫染色检测FOXA2/SOX17双阳性细胞,效率应达到85-90%。
四、中/后肠模式化(为期3-4天)
- 诱导球状体形成: 吸除内胚层培养基,加入中/后肠分化培养基,每日更换。48小时后,通过立体显微镜观察上皮增厚,至72-96小时,球状体(spheroids)脱离单层细胞。
- 收集球状体: 使用200μL枪头收集游离球状体,每管约50个,置于冰上备用。
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